龙眼UBP家族全基因组鉴定及其在外源胁迫下的表达分析
Genome-wide identification and expression analysis of Dimocarpus longanUBP family and its expression analysis under drought stress
通讯作者:
收稿日期: 2021-11-16
基金资助: |
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Received: 2021-11-16
作者简介 About authors
童宁(1999—),ORCID:https://orcid.org/0000-0009-2826-5666,女,硕士研究生,主要从事果树分子生物技术研究. 。
关键词:
Keywords:
本文引用格式
童宁, 张春渝, 许小琼, 陈晓慧, 申序, 赖钟雄.
TONG Ning, ZHANG Chunyu, XU Xiaoqiong, CHEN Xiaohui, SHEN Xu, LAI Zhongxiong.
泛素(ubiquitin)是一种普遍存在于真核生物中的由76个氨基酸组成的多肽[1]。通过一系列酶将泛素分子与目标蛋白的特异性相结合,并引导其对蛋白酶体进行降解的过程称为泛素化。泛素化是一种常见的蛋白质翻译后的修饰方式,也是一种细胞内信号[2],在细胞分裂、自噬、消亡、DNA修复、蛋白质降解等生物学过程中具有重要调控作用。通过蛋白酶特异地从与泛素分子结合的蛋白质底物中切割泛素分子的过程称为去泛素化,这些蛋白酶即为去泛素化酶(deubiquitinating enzymes,DUBs)。迄今为止,人类基因组中已被识别的去泛素化酶有100余种,根据其氨基酸序列与保守结构域的不同,可分成6个家族:泛素特异蛋白酶(ubiquitin-specific protease,UBP,在哺乳动物中被称为USP)、泛素羧基末端水解酶(UCH)、卵巢肿瘤蛋白酶(OTU)、Machado-Joseph结构域蛋白酶(MJD)、MINDY蛋白酶(MINDY)和JAMM结构域蛋白酶(JAMM)。其中前五大家族属于半胱氨酸蛋白酶,最后一个属于锌金属蛋白酶[3]。UBP家族成员数量最多,超过50个,且结构多样化[4]。
UBP家族成员具有2个相似的催化残基三联体,每个三联体包含2个短且高度保守的半胱氨酸盒和组氨酸盒,是催化位点的关键部分(半胱氨酸盒中的Cys,组氨酸盒中的His和Asp/Asn)[5]。半胱氨酸盒与组氨酸盒的区域被称为泛素羧基末端水解酶(UCH)结构域,其在空间和结构上比较保守[6],但不同成员UCH结构域之间的氨基酸序列不同,其氨基酸种类、数量的差异均较大[7]。目前对UBP基因的分析主要集中在单个基因的生物功能。如发现拟南芥中AtUBP1和AtUBP2基因可能与体内异常氨基酸代谢的调节有关[8],AtUBP12参与了生物钟反馈调节,且可调控开花时间[9];哺乳动物中USP1参与了胃癌的早期阶段转化[10],USP24与细胞凋亡、细胞周期和DNA的损伤修复有关[11];USP13在小鼠单核巨噬细胞破骨分化中起重要作用[12]。已对UBP家族进行全基因组鉴定的有拟南芥(27个成员)[6]、毛竹(48个成员)[13]、水稻(21个成员)[14]等,尚未见对龙眼进行全基因组鉴定的报道。
龙眼(Dimocarpus longan Lour.),热带亚热带常绿经济型果树,因其假种皮富含多种磷质、氨基酸、维生素、类黄酮等[15],具有降血糖、补血健脑等作用[16]。外界环境以及自身的遗传特性和基因的表达调控对龙眼胚胎发育具有重要影响,而龙眼的胚胎发育与树体的生长发育和果实的品质产量相关。目前已知UBP广泛存在于真核生物,能通过去泛素化作用调节生物的多种代谢过程,且已发现该家族部分成员参与胚胎生长发育,甚至会导致胚胎死亡,但关于龙眼DlUBP基因在胚胎发育中的作用尚未见报道。因此,对DlUBP基因进行分析有助于进一步了解DlUBP家族在龙眼胚胎发育中的作用。通过对DlUBP家族全基因组的鉴定,分析其基因结构、蛋白质结构、启动子顺式作用元件、进化关系,并分析龙眼体胚中DlUBP基因在不同时间梯度的脱落酸处理和干旱胁迫处理下的表达情况,以期为UBP基因家族在龙眼体胚或其他植物生长发育调控的研究提供参考。
1 材料与方法
1.1 材 料
1.1.1 数据来源
第3代龙眼基因组数据库,龙眼转录组数据库,拟南芥(Arabidopsis thaliana)UBP家族的基因序列和氨基酸序列下载于Uniprot数据库(
1.1.2 实验材料
龙眼体胚发生过程中的胚性愈伤组织(embryonic callu,EC)来源于福建农林大学园艺植物生物工程研究所。参照赖钟雄[17]的培养方法,以EC为起始材料获得不完全胚性紧实结构(incomplete compact pro-embrogenic cultures,ICpEC)和球形胚(globular embryos,GE)。选择培养20 d的生长发育良好的龙眼胚性愈伤组织,分别接种于100 μmol·L-1脱落酸(abscisic acid,ABA)、10%聚乙二醇(PEG 6000)的MS液体培养基中,于25 ℃、110 r·min-1黑暗条件下摇床培养0,4,8,12 h,收样,液氮速冻后-80 ℃封存于冰箱,用于后续qPCR定量分析。
参照Tripue(Transgen,China)试剂盒说明书提取龙眼在EC、ICpEC、GE 3个阶段以及经ABA和PEG6000处理的RNA,再参照PrimerScript RT Reagent Kit (TaKaRa)试剂盒说明书逆转录合成qPCR所需的cDNA。
1.2 方 法
1.2.1 DlUBP基因的鉴定
DlUBP基因在染色体上的定位:利用NCBI BLAST在线网站,将龙眼基因组数据库与模式植物拟南芥AtUBP的氨基酸序列进行同源比对,对DlUBP家族成员进行筛选,获得18条DlUBP候选序列。结合保守结构域数据库(conserved domains database,CDD)和SMART对蛋白结构域的预测分析,确定龙眼UBP基因组中存在18条DlUBP序列。参考拟南芥的命名方式,命名DlUBP基因。最后根据龙眼基因组注释信息和DlUBP基因的ID,用TBtools软件在染色体上绘制DlUBP基因的位置分布。
DlUBP基因结构及蛋白质分析:基于龙眼genome文件,用TBtools分析18个DlUBP基因的结构;从ExPASy中查询18个DlUBP基因的蛋白质等电点、分子质量和氨基酸数等,并列表分析;通过MEME在线软件分析DlUBP的保守基序,并下载XML格式的分析结果,用TBtools软件进行可视化绘图分析。根据DlUBP基因的氨基酸序列,用TBtools软件中的Batch SMART进行蛋白质结构域预测以及可视化分析。
UBP家族进化树的构建:先采用MEGA5.05软件中的邻近法(neighbor-joining method)单独对DlUBP家族进行进化分析,然后采用相同的方法构建龙眼、拟南芥、水稻、甜橙4个物种的UBP家族氨基酸序列系统进化树,自展系数法(Boot strap)设置1 000次重复检验。保存nwk格式的进化树文件,使用iTOL在线网站(
DlUBP基因启动子分析:利用DlUBP基因组序列和基因结构注释信息文件,经TBtools软件提取获得18条CDS上游碱基对为2 000 bp的DlUBP序列,采用PlantCARE在线网站(
1.2.2 DlUBP基因在龙眼不同体胚发生阶段的表达分析
从龙眼基因组数据库中提取18个DlUBP基因在龙眼体胚发生过程中EC、ICpEC、GE 3个阶段的特异表达每千个碱基转录每百万映射读取的碎片(fragments per kilobases per million mapped fragments,FPKM),提交至TBtools软件进行热图绘制,并分析DlUBP基因在不同体胚发生阶段的特异性表达情况。
1.2.3 DlUBP基因表达量的qPCR分析
为了解DlUBP基因在脱落酸处理和干旱胁迫处理下的表达情况,将DlUBP2、DlUBP8-1、DlUBP12-1、DlUBP12-2、DlUBP17、DlUBP19、DlUBP22-2和DlUBP23等8个基因的CDS序列通过 Primer premier 6设计正向引物和反向引物,再通过引物检测网站Beacon Designer Free Edition(
表1 实时荧光定量 PCR 引物
Table 1
基因名称 | 正向引物 | 反向引物 |
---|---|---|
DlUBP2 | ACCATGAGAGGAGGCCACTACG | CACGCACATAGGCATCGCTGAT |
DlUBP8-1 | CCATCTGGCTCGGAATGACTCG | AGAAGACGGCTGAGTGGTTCCA |
DlUBP12-1 | ACGATGAGATGCTGGTGCCACA | ACTGCCTGTGCGTCCACTGTA |
DlUBP12-2 | CCTGCTGGTGCTGTGGAGAATC | TCCGCCATTTGTAACCGCCAAC |
DlUBP17 | GGAGGAATGCGGTTGCCAGAA | CGTGGTGGTGGGAGAGAAACAG |
DlUBP19 | ATCGCTTTCGGGCTGCTCCA | GCACTTCTTGTCGCCAGGACTG |
DlUBP22-2 | AGGTCACCATCGGATCGGTTGT | CCTGAATGCTGCCACCAACTGT |
DlUBP23 | GCAGCCATCAGCTCCATCTGTG | TGGGACATGGGAACCGAGACTT |
2 结果与分析
2.1 DlUBP全基因组鉴定与蛋白特性分析
通过与拟南芥基因组进行比对,利用CDD和SMART检测蛋白的结构域,共获得18个DlUBP基因。通过对龙眼与拟南芥、水稻和甜橙的UBP家族成员的系统进化分析,参照拟南芥家族成员的命名方法,将DlUBP家族成员分别命名为DlUBP2、DlUBP4、DlUBP5、DlUBP8-1、DlUBP8-2、DlUBP9、DlUBP12-1、DlUBP12-2、DlUBP12-3、DlUBP16、DlUBP17、DlUBP19、DlUBP21、DlUBP22-1、DlUBP22-2、DlUBP23、DlUBP25、DlUBP26。
通过分析DlUBP全基因组的蛋白质理化性质,发现UBP家族氨基酸数为369~1 117个,相差较大,除DlUBP2、DlUBP12-1、DlUBP12-2、DlUBP16外,其余基因的氨基酸数在1 000个以下;分子质量为42.11~130.80 ku;等电点为5.14~9.32,见表2。
表2 DlUBP全基因组蛋白质特性
Table 2
基因名称 | 基因 | 注释到拟南芥中的成员 | 染色体 | 氨基酸数/个 | 分子质量/ku | 等电点 |
---|---|---|---|---|---|---|
DlUBP2 | Dlo002772 | AtUBP2 | Chr1 | 1 004 | 109.26 | 5.54 |
DlUBP4 | Dlo017141 | AtUBP4 | Chr7 | 369 | 42.11 | 5.93 |
DlUBP5 | Dlo020549 | AtUBP5 | Chr9 | 946 | 105.49 | 5.86 |
DlUBP8-1 | Dlo025465 | AtUBP8 | Chr12 | 895 | 100.67 | 5.51 |
DlUBP8-2 | Dlo029798 | AtUBP8 | Chr14 | 832 | 95.09 | 5.24 |
DlUBP9 | Dlo032528 | AtUBP9 | Chr15 | 930 | 104.65 | 5.14 |
DlUBP12-1 | Dlo011562 | AtUBP12 | Chr5 | 1 117 | 130.80 | 5.50 |
DlUBP12-2 | Dlo029835 | AtUBP12 | Chr14 | 1 072 | 125.80 | 5.48 |
DlUBP12-3 | Dlo025482 | AtUBP12 | Chr12 | 957 | 112.46 | 5.48 |
DlUBP16 | Dlo013767 | AtUBP16 | Chr6 | 1 071 | 116.60 | 6.11 |
DlUBP17 | Dlo016225 | AtUBP17 | Chr7 | 875 | 96.86 | 8.88 |
DlUBP19 | Dlo000876 | AtUBP19 | Chr1 | 710 | 79.13 | 6.00 |
DlUBP21 | Dlo027879 | AtUBP21 | Chr13 | 673 | 74.85 | 5.66 |
DlUBP22-1 | Dlo000463 | AtUBP22 | Chr1 | 792 | 89.04 | 7.99 |
DlUBP22-2 | Dlo000824 | AtUBP22 | Chr1 | 556 | 63.52 | 8.46 |
DlUBP23 | Dlo019901 | AtUBP23 | Chr9 | 962 | 105.18 | 9.32 |
DlUBP25 | Dlo009614 | AtUBP25 | Chr4 | 620 | 68.62 | 8.86 |
DlUBP26 | Dlo010069 | AtUBP26 | Chr4 | 847 | 94.93 | 7.84 |
2.2 DlUBP基因染色体定位分析
图1
2.3 DlUBP基因结构与蛋白质分析
18个DlUBP基因的内含子数、外显子数及其位置如图2所示,可知,DlUBP基因内含子数为2~31个,其中DlUBP12-1基因的内含子数最多,有31个,其次是DlUBP12-2,有30个,DlUBP2和DlUBP22-2基因的内含子数最少,均为2个,大部分DlUBP基因的内含子数在20以内。此外,DlUBP基因的长度存在较大差异,DlUBP8-2基因最长,DlUBP22-2基因最短,这可能由内含子数差异较大引起,也可能导致各DlUBP基因之间的功能有所区别。
图2
图2
DlUBP基因结构与保守motif分布图
Fig.2
Longan DlUBP family member gene structure and conservative motif distribution map
图3
2.4 植物UBP家族成员的系统进化树分析
基于龙眼、拟南芥、水稻、甜橙的氨基酸序列,用MEGA5.05软件构建了4个物种的68条氨基酸序列系统进化树,如图4所示。参考拟南芥中AtUBP基因的分类方式[8],采用SAMRT蛋白质结构域分析,根据基因的蛋白质结构差异,将DlUBP基因分为10组:G1的成员为DlUBP2,G2的成员为DlUBP4,G3的成员为DlUBP5、DlUBP8-1、DlUBP8-2、DlUBP9,G5的成员为DlUBP12-1、DlUBP12-2、DlUBP12-3,G7的成员为DlUBP16、DlUBP17、DlUBP19,G8的成员为DlUBP21,G9的成员为DlUBP22-1、DlUBP22-2,G10的成员为DlUBP23,G12的成员为DlUBP25,G13的成员为DlUBP26。其中,G2成员中包含1个ZnF-UBP锌指结构,G5成员中包含1个MATH结构域,G7成员中包含1个zf-MYND锌指结构,G3部分成员中以及G13成员中包含1个DUSP结构域。
图4
2.5 DlUBP基因启动子分析
使用PlantCARE在线网站对DlUBP基因启动子序列中可能存在的顺式作用元件进行预测分析,结果如图5所示。可知,18个DlUBP基因的启动子序列均含CAAT-box和TATA-box,且CAAT-box的数量比TATA-box的多,说明DlUBP基因都能够正常转录。18个DlUBP基因均含有较多的光响应元件,大部分DlUBP基因具有厌氧诱导响应元件,响应脱落酸和茉莉酸甲酯激素应答;50%以上的基因具有干旱胁迫下MYB转录因子的结合位点和防御与应激响应元件;44%左右的基因具有低温响应元件、光胁迫下MYB转录因子的结合位点和MYBHv1结合位点;33%左右的基因响应生长素、水杨酸和赤霉素应答;少数基因具有胚乳表达、缺氧特异性诱导响应元件和参与类黄酮生物合成基因调控的MYB结合位点,参与昼夜控制和玉米醇溶蛋白的代谢调控;与种子特异调控有关的响应元件只存在于DlUBP5基因中。由此可知,DlUBP基因具有较多光响应、激素响应元件以及与植物生长发育有关的其他顺势作用元件,而且不同的基因具有的顺式作用元件的种类及数量不同,表明DlUBP基因可能在胚胎发育、种子生长、植株生长发育和抗逆等过程中有重要作用,且不同的DlUBP基因所起的作用不同。
图5
2.6 DlUBP基因在龙眼体胚发育过程中的表达分析
利用龙眼基因组数据库中DlUBP基因在龙眼体胚发生过程中EC、ICpEC、GE 3个阶段的特异表达FPKM值绘制聚类分析热图(图6),发现DlUBP基因在体胚发生阶段的表达模式共有6种:(1) 在EC和GE阶段表达下调,在ICpEC阶段上调(DlUBP2、DlUBP5、DlUBP8-1、DlUBP8-2、DlUBP9、DlUBP12-1、DlUBP12-2、DlUBP17、DlUBP26);(2) 在ICpEC和GE阶段上调,在EC阶段下调(DlUBP22-2、DlUBP19、DlUBP23);(3) 在EC和ICpEC阶段上调,在GE阶段下调(DlUBP12-3、DlUBP21、DlUBP25);(4) 在EC阶段上调,在ICpEC和GE阶段下调(DlUBP22-1);(5) 在EC和GE阶段上调,在ICpEC阶段下调(DlUBP4);(6) 在EC和ICpEC阶段下调,在GE阶段上调(DlUBP16)。整体来看,多数DlUBP基因的表达在EC阶段和GE阶段下调,在ICpEC阶段上调,推测DlUBP基因可能有助于龙眼胚性愈伤组织的分化。
图6
图6
DlUBP基因在龙眼体胚发生各阶段的特异表达
Fig. 6
The specific expression of different stages of somatic embryogenesis in the DlUBP gene
2.7 DlUBP基因在脱落酸和干旱胁迫处理下的表达量分析
DlUBP基因启动子中含有较多的脱落酸顺式作用元件,为探究DlUBP基因在脱落酸处理下的表达情况,筛选含脱落酸响应元件的6个基因:DlUBP2、DlUBP8-1、DlUBP12-1、DlUBP12-2、DlUBP17、DlUBP19,采用qPCR方法分析它们在不同时间梯度(0,4,8,12 h)脱落酸处理下的表达量,如图7所示。可知,DlUBP2、DlUBP12-1、DlUBP17基因在脱落酸处理下表达量先升高后降低,处理4 h时表达量达最高;DlUBP8-1基因在脱落酸处理下的表达量明显降低,均低于0 h对照组;DlUBP19基因的表达量随脱落酸处理时间的增加逐渐升高,在处理12 h时表达量急剧升高;DlUBP12-2基因的表达量在脱落酸处理4 h时无明显变化,在处理8 h达到最高,然后显著下降,在处理12 h时最低,且低于0 h对照组。综上所述,脱落酸能影响DlUBP基因的表达,且多数DlUBP基因的表达量在处理4 h时较高,在处理12 h时最低,猜测脱落酸处理时间较长会抑制多数DlUBP基因的表达。
图7
图7
6个DlUBP基因家族成员在不同脱落酸处理时间下的表达情况
不同小写字母表示在0.05水平上具有显著性差异。
Fig.7
Expression of six DlUBP gene family members
Different lowercase letters indicate significant difference at 0.05 level.
为探索DlUBP基因在干旱胁迫处理下的表达水平,从18个DlUBP基因中随机挑取含干旱胁迫响应元件的6个基因:DlUBP2、DlUBP8-1、DlUBP12-2、DlUBP17、DlUBP22-2、DlUBP23,用qPCR方法分析它们在10%聚乙二醇(PEG6000)渗透调节剂模拟的不同时间梯度(0,4,8,12 h)干旱胁迫处理下的表达量,结果如图8所示。可知,随着处理时间的增加,DlUBP2、DlUBP22-2、DlUBP23基因的表达量先降低后升高;DlUBP12-2基因的表达量先降低再升高再降低,在处理8 h时表达量最高。4个基因的表达量均在处理4 h时达最低水平,低于0 h对照组,推测干旱胁迫对这4个基因的表达产生影响,且在处理4 h时抑制其表达,在处理8和12 h时促进其表达(DlUBP23的表达在处理8 h时被抑制)。此外,在干旱胁迫处理下DlUBP17的表达量均高于0 h对照组,但在处理8 h后即使增加处理时间,表达量的升高幅度也非常小,推测干旱胁迫对DlUBP17的表达有促进作用,且表达量可能在处理8 h后逐渐趋于稳定。结果表明,干旱胁迫处理影响DlUBP基因的表达,且处理时间不同,对表达量的影响亦不同。
图8
图8
6个DlUBP基因家族成员在不同干旱胁迫处理时间下的表达情况
不同小写字母表示在0.05水平上具有显著性差异。
Fig.8
Expression of six DlUBP gene family members
Different lowercase letters indicate significant difference at 0.05 level.
3 讨 论
3.1 DlUBP基因的功能可能具有多样性
去泛素化酶广泛存在于真核生物体内,它们在细胞内分工明确,同时相互协调,共同维护细胞内泛素化水平的稳定[19]。目前对于去泛素化酶功能的研究尚不够深入,已知的生理功能主要有激素调控与应激反应[20]、肿瘤与癌症的发生[21]等,在植物体内主要调控植物的形态发生、免疫应激和信号转导和程序性细胞死亡等,在动物体内参与癌症与肿瘤[22]的发生、神经和生殖细胞分化、DNA损伤修复等[23]。泛素特异蛋白酶是去泛素化酶的一种,其生物学功能与去泛素化酶相似,可调节植物生长发育和对环境响应,并介导多种信号转导途径。参照拟南芥的基因分类鉴定方法,对龙眼、拟南芥、甜橙、水稻4个物种进行进化树分析,将基因分为14类。龙眼中有18个DlUBP基因,拟南芥中有27个AtUBP基因,由于龙眼与拟南芥的亲缘关系较近,猜测其生物学功能也可能较相似[24]。DOELLING等[25]的研究指出,缺乏AtUBP14基因会阻止拟南芥胚胎的发育甚至导致胚胎死亡,AtUBP13基因在调节根分生组织发育中起关键作用[26]。此外,AtUBP2可能参与了体内异常氨基酸的代谢,AtUBP12能调节开花时间,AtUBP26在种子发育过程和花期中起重要调控作用等。龙眼中也有相同的UBP基因,且其蛋白质结构的相似程度较高,如DlUBP2和AtUBP2都有1个ZnF-UBP锌指结构,DlUBP12和AtUBP12都有1个MATH 结构域,DlUBP26和AtUBP26都有1个DUSP结构域,因此推测龙眼中的UBP基因有类似的功能。LEE等[27]通过分析小鼠胚胎阶段的Northern印迹发现,USP22在多数发育的小鼠胚胎中普遍表达,且在各种成人组织和胚胎早期均有广泛表达,于是猜测其与胚胎发生有关。不仅如此,分析发现,DlUBP基因启动子含有20余种顺式作用元件,包括光响应元件、厌氧诱导响应元件、缺氧特异性诱导元件、干旱胁迫响应元件、多种激素响应元件等,且不同的DlUBP基因所含的顺式元件的种类和数量不同。DlUBP12-1和DlUBP12-3基因含有参与类黄酮生物合成基因调控的MYB结合位点,表明DlUBP基因可能参与龙眼体胚发生过程中花青素、黄酮类化合物等次生代谢产物的合成[28];DlUBP5基因含有细胞周期调控元件,猜测DlUBP基因可能与龙眼体胚细胞周期的调控有关。总之,18个DlUBP基因在功能上既有特异性也有互补性,共同维护龙眼正常生长发育并提高其抵御逆境胁迫的能力。
3.2 DlUBP基因可能参与脱落酸的调控并对干旱胁迫有应激反应
组织特异性和应激反应基因表达情况主要取决于启动子中的顺式元件,顺式元件与多种应激反应基因密切相关。分析发现,DlUBP基因启动子含有多种植物激素的响应元件,如脱落酸响应元件、赤霉素响应元件、茉莉酸甲酯响应元件、水杨酸响应元件等,这表明龙眼中的DlUBP基因可能在多种激素胁迫响应中起作用。MOON等[13]指出,毛竹中含有与脱落酸对应的顺式元件,同时证明了有些PeUBP基因具有较高的脱落酸敏感性,推测PeUBP基因在植物发育和脱落酸胁迫响应中发挥了作用。在本研究中,随着脱落酸处理时间的增加,6个DlUBP基因中的5个表达量呈下降趋势,有些甚至低于0 h对照组,仅DlUBP19的表达量逐渐上升,由此推测DlUBP基因可能参与脱落酸的调控,且基因表达情况与处理时间有很大关系。
在胁迫条件下,脱落酸快速产生,调节气孔关闭,影响胁迫响应基因的表达。JINFENG等[29]指出,AtUBP24是拟南芥中脱落酸信号传导和盐胁迫耐受性的负调控因子,若缺少AtUBP24基因,可能导致拟南芥在脱落酸诱导的气孔调节中对干旱胁迫的敏感性增加。不仅如此,文献[30-31]指出,在干旱胁迫下,MYB受脱落酸依赖,可通过调节胁迫增加植物的耐旱性[30]。对龙眼DlUBP基因启动子的分析发现,50%以上的DlUBP家族成员启动子含有在干旱胁迫下MYB转录因子结合位点,且其中一半成员具有1个以上该结合位点,初步猜测DlUBP基因可能对干旱胁迫有响应。通过分析干旱胁迫处理不同时间梯度下6个DlUBP基因的表达量发现,在干旱胁迫处理不同时间后,6个DlUBP基因的表达量均呈上升或下降趋势,大部分基因的表达量在干旱胁迫处理4 h后呈上升趋势,因此推测DlUBP家族对干旱胁迫有应激反应,且适当时间的干旱胁迫处理有利于基因表达。
4 结 论
对龙眼泛素特异蛋白酶(UBP)进行全基因组鉴定,对体胚早期不同阶段以及在外源胁迫下的表达进行了分析。在龙眼中共鉴定出18个DlUBP基因,分析了DlUBP基因的结构、蛋白质理化性质、染色体定位、启动子顺式元件、在不同时间梯度的脱落酸处理和干旱胁迫处理下的表达情况。结果表明,DlUBP基因可能参与龙眼体细胞胚胎发育、脱落酸和干旱胁迫响应过程,可为后续对龙眼UBP家族单基因的功能验证以及外源胁迫的响应机理研究提供参考。
http://dx.doi.org/10.3785/j.issn.1008-9497.2023.03.001
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Control of AIF-mediated cell death by antagonistic functions of CHIP ubiquitin E3 ligase and USP2 deubiquitinating enzyme
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去泛素化酶与肿瘤
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Deubiquitinating enzymes and tumors
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植物去泛素化酶研究进展
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Research progress of plant deubiquitinating enzymes
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龙眼类受体蛋白激酶CRK家族全基因组鉴定及表达调控分析
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Genome identification and expression regulation analysis of longan-like receptor protein kinase CRK family
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The ubiquitin‐specific protease UBP14 is essential for early embryo development in Arabidopsis thaliana
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Regulation of the stability of RGF1 receptor by the ubiquitin-specific proteases UBP12/UBP13 is critical for root meristem maintenance
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The expression patterns of deubiquitinating enzymes, USP22 and Usp22
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调控植物黄酮类化合物生物合成的MYB转录因子研究进展
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Research progress of MYB transcription factor regulating the biosynthesis of plant flavonoids
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Ubiquitin-specific protease
Identification and characterization of GmMYB118 responses to drought and salt stress
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Ectopic expression of the sesame MYB transcription factor SiMYB305 promotes root growth and modulates ABA-mediated tolerance to drought and salt stresses in Arabidopsis
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